不同稀释倍数下计算菌落总数的方法

(10+20)/2=15＜100(100+110)/2=105＞100再问：记录试验报告的时候大于100的，直接记录＞100吗？还是要记录实际数据？再答：记录试验报告的时候大于100的，直接记录＞10

酶活是计算你的反应体系中总共加了多少酶液.你先把1ml稀释成21ml,再取其中的1ml反应,所以你的反应体系中总共加了1/21ml酶液.

由于稀释倍数不同，计算时不能简单相加，应乘上相应稀释倍数再取平均值．某同学在101、102、103倍稀释的平均菌落数为2760、295和46，由于时101稀释倍数太小，获得的数据不准确，故应取后两者的

CFU叫做菌落形成单位.做菌落总数往往采用的是平板计数法,经过培养后我们数出平板上所生长出的菌落个数,从而计算出每毫升或每克待检样品中可以培养出多少个菌落,于是以CFU/ml或CFU/g报告之.也就是

1、直接向已灭好菌的平板注入灭好的营养琼脂,可做空白比较2、先给灭好菌的平板中加入1ml灭好菌的0.085%的生理盐水,再向其注入灭好菌的营养琼脂即可

例如,你做了三个稀释度,分别是：10倍稀释、100倍稀释、1000倍稀释,那么1000倍稀释的那一份就是最高稀释倍数,10倍稀释的那一份就是最低稀释倍数.

这主要有3个原因：1、在30-300的范围内不会因为菌落数太多而导致肉眼难以判读2、如果稀释度过大,菌落数低于30的稀释度则多一个菌落或少一个菌落可造成10个以上的误差,即精密度不够.3、超过300个

农药简单稀释方法您好?供您参考：农药简单稀释方法水的总容量16升X1000毫升=16000除以（需要稀释倍数）=用药量（毫升）一般情况下产品说明书都有相关规定,比如稀释倍数、亩用量、毫升、克等.以16

转化后在含抗生素的平板上长出的菌落即为转化子,根据此皿中的菌落数可计算出转化子总数和转化频率,公式如下：转化子总数＝菌落数×稀释倍数×转化反应原液总体积／涂板菌液体积转化频率（转化子数／每ug质粒DN

要用30到300之间的计数.25的无效.直接32的乘以稀释倍数再问：6.3.1每个稀释度的菌落数应采用两个平板的菌落数那这个意思是指什么呢？再答：你要是有做出两个有效数据取平均数啊

实验没做好,重做.两个梯度间菌落数量应是10倍的关系.你这大大超过了.要么稀释有问题,要么第一梯度平板表面有水,导致菌大量蔓延.

首先你的这个菌落数不太正常,即使同一个稀释度的两个平板差别都很大,不同稀释度之间也没有明显差距,很可能是操作有问题或者有污染,很可能是稀释液有污染.建议检查一下.在都小于30的情况下应该用稀释倍数最低

结果按照稀释倍数最小的计数,那就是1ML有6个,不是10个.若10倍是10个,100倍是15个,结果还是以10倍的计数.根据这句话“若所有稀释度均小于30cfu,则按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数

纯净水里面的微生物本身就很少如果多了,人喝了肯定得拉肚子所以测里面的微生物含量的时候根本不用稀释如果经过稀释之后,测数反而长出菌来了,有可能是污染,有可能是本身水里面含有的杂菌正好在那0.1ml的水里

CFU是ColonyFormingUnits)的缩写,翻译成汉语是菌落形成单位,cfu/g(ml)指的是每g(ml)检样含有的菌落总数,具体指在普通琼脂培养基上在一定条件下,培养出的菌落总数.一般以1

从最后的稀释液中取0.1mL涂布,形成了若干菌落,则1mL稀释液中有菌个数为：某稀释液中的菌落数×10,再乘以稀释倍数即为盛有90mL无菌水的锥形瓶中1mL的菌数,而锥形瓶中的100mL总共含有的菌体

大肠菌群用平板计数法：称取25g样品溶解于225ml生理盐水中,混匀,溶化的琼脂（采购结晶紫中性红琼脂按照试剂说明操作）,凝固后再覆盖一层（3ml左右),菌落

楼主可以先测一下OD,确定一下菌的浓度.如果浓度太低找不到是很正常的.而且如果菌很小的话,看不到也是很正常的.也可以调一下对比色,或者染色,让细胞更加显眼.如果以上情况都不是的,估计就是楼主的操作方法

估计菌落里的细菌都死了,没形成菌落,或者就是稀释得太狠了,菌落被无限扩大,超出了视野范围,你看看那些细菌会不会动,如果好的话,它是会来回游动的,很明显的再问：稀释得太狠？？？

是你要是懒得数全部就在培养皿上划个‘十’或者‘井’字,数一小格就好了.最后记得按比例算回去.这还是我老师教的.