为什么质粒DNA样品琼脂糖凝胶电泳中超螺旋结构跑得比开环的快

你给的信息的确很少了.楼上2位都分析的很好,不过,我补充说一下露姬雅关于质粒三条带的解释.现在对于3条带的解释是这样的：最前面跑最快的是超螺旋,质粒是超螺旋的,你电泳的时候最亮很正常；中间的是开环质粒

主要是看tris的缓冲范围,Tris缓冲液的有效缓冲范围在pH7.0到9.2之间,算是中性和偏碱性.DNA肯定是要带负电荷的,所以电泳的时候才会向正极跑.电泳槽一般都会标明正负极的,只要把电源和电泳槽

主要的原因是保持琼脂凝胶和周围的缓冲体系保持相同的pH值,当然这种pH值是前人优化过的,最有利于核酸分离和稳定的pH条件；如果凝胶和缓冲体系的pH存在较大的差异,势必会影响核酸的分离效果.

跑电泳啊,如果有多条条带说明东西不纯.在保证纯度的情况之下测OD值,再转换成质量,似乎是1OD等于33.8ug?然后根据质粒的大小,计算质粒的分子量.把质量除以分子量,就得到摩尔数了.

电泳出现拖尾现象,英文成为smear,就是弥散.其原因,主要从以下两个方面考虑：1、PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差,dNTP浓度过高,Mg2+浓度过高,退火温度过低,循环次数过多,而

应该是两条带吧,一条是核基因,一条是质粒,但是如果有些噬菌体的质粒丢失的话,可能那条带不明显吧

根据你扩增的产物情况选择合适分辨率的凝胶浓度,比如：如果你的条带离引物二聚体很远,且比较单一,那可用1%~1.5%的胶即可,可稍微制厚一点,方便点样；如果你的条带只有一两百即离引物二聚体很紧或者非目标

单酶切?双酶切?一个位点?两个位点?单酶切一个位点,完全一条带,不完全两条带,单酶切两个位点,完全,两条带,不完全,三条带,双酶切,完全两条带,不完全,三条带再问：若是单酶切两个位点，出现一条带是什么

影响DNA迁移率的因素主要有DNA的片断大小,DNA的结构.DNA片断越小,在电泳是迁移越快,反之,则越慢.DNA通常有三种不同的构象：共价闭合环状、线型、开环型.共价闭合环状的迁移速度最快,其次为线

琼脂糖是从海藻中提取的一种直链多糖,它由D-半乳糖和3,6-脱水-L-半乳糖的残基交替排列组成的线型多聚糖.当琼脂糖加热至90～100℃左右,即可形成清亮透明的液体.浇在模板上冷却至40～45℃时,凝

你这第一块是DNA第二块是质粒?怎么都有两条带?而且看你PCR结果基本没有扩出来啊,也不知道你要问什么问题.再问：第一个是质粒，第二个是DNA，pcr确实没扩出来，就分析一下这几个图结果的原因(跑胶的

点完样再加缓冲液,样品会被冲出来,另外不加缓冲液就拔梳子,孔道容易变形,不规则,

GelExtractionKitPlasmidExtractionKit每家公司都有自己的命名这哪有什么标准的写啥老外都能看懂

我硕士专业是分子生物学这方面的,我可以很负责地告诉你,质粒DNA分子具有三种构型：共价闭合环开DNA（cccDNA,SC构型）、开环DNA（OC构型）和线性分子（L构型）.在细菌体内,质粒DNA是以负

多大浓度的胶?加样孔在上面还是下面?marker多大,尤其最亮那条带是多少?另外,marker好像是在最右边啊.再问：0.8的胶。写错了，从左向右。marker最右边。加样孔在上面。只求能分析清楚每个

可能是梳子不齐,或者是胶边上和中部的厚度不一样!

1.trylowyouragaroseconcentration,say,to0.8%.2.heatyourPCRmixat60Cfor5minutesbeforeloadingit.3.whenyo

先回答楼下提取质粒时可能会残留乙醇.乙醇比缓冲液轻,如果样品有乙醇,你点样时乙醇就把样品带出来了.

没看见附图,染料和条带当然会向正极移动.检查你的电源是否反插了,还有就是你重配下tae缓冲液.再问：电极没有反插，DNA向正极移动。核算染料本来是应该均匀的分散在胶体中，可是发现核酸染料会随着电泳时间

异丙醇是为了增强DNA和柱子的吸附不过一般都不需要加的吧再问：异丙醇会不会在我们转移到柱子之前就把DNA沉淀了，转移的适合可能就留在管底了，转移到柱子上的量就少了再答：不会哪有那么快而且常温下沉淀的很