利用血细胞计数板,为什么计数板.血盖片.微量吸管等所用器材均应清洁干燥
来源:学生作业帮助网 编辑:作业帮 时间:2024/11/08 17:16:29
原因有好几种:1,在你取液时未摇匀,吸取的那些作为统计的液中酵母菌偏小.2、你在计数时,未及边缘的(计数原则,计上不计下,计左不计右)3、你在调显微镜时焦距未达到计数板槽内,而是聚焦在盖玻片上(其上少
有可能不一样.血球计数板能将死细胞计算在内,而平板计数法只能计数活细胞(只有活细胞才能在平板上长),故一般血球计数法要比平板计数法的结果大.希望对你有所帮助.
因此,搞好细胞计数的质量控制一般需采用以下措施.1.避免技术误差,纠正仪器误差(1)所用器材均应清洁干燥,计数板、血盖片、微量吸管及刻度吸管的规格
当培养液中酵母菌浓度较高时,计数板上每格内酵母菌数量太多不便于计数,可以取培养液进行稀释后再计数~~
总体题目目测没错...可能出错的地方是:酵母菌菌落分布不均匀时不能采取抽样检测的方法,因为菌液和肉眼可见的菌落内酵母菌的数量差异很大.
都可以得到如果不染色得到的是总数如果染色可以区分活菌与死菌
1.灌板后不要立即在镜下观察,稍微静置几分钟让细胞沉降到和方格线一个平面后再观察.2.减小光圈,或降低光源亮度.3.适当对焦.你的状况采取第一种方法解决的可能性较大.
应该先盖玻璃片再加计数悬液,因为盖玻片和计数板之间的凹槽形成的狭缝空间的体积是固定的,加液体时靠虹吸作用将液体吸入.如果反之,则盖玻片可能由于已加入的液滴的表面张力作用使其未能严密的盖到计数板表面上,
操作时没有先盖盖玻片再滴加悬液,导致体积不准确.避免:先盖盖玻片再滴加悬液.细胞密度太高.避免:稀释溶液.溶液不均匀.避免:滴加溶液前混匀悬液.
血细胞计数的误差分别来源于技术误差和固有误差.其中由于操作人员采血不顺利,器材处理、使用不当,稀释不准确,细胞识别错误等因素所造成的误差属技术误差;而由于仪器(计数板、盖片、吸管等)不够准确与精密带来
90÷500×0.1mL=0.18mL(90个小室的体积)54÷0.18ml=300个/mL(稀释后的数量)1毫升酵母菌样品中约有酵母菌:300个/mL×100倍=3000个/mL
血细胞计数的误差分别来源于技术误差和固有误差.其中由于操作人员采血不顺利,器材处理、使用不当,稀释不准确,细胞识别错误等因素所造成的误差属技术误差;而由于仪器(计数板、盖片、吸管等)不够准确与精密带来
我告诉你简单的方法保证你能懂,望采纳→_→再答: 再答:很详细哦再答: 再问:谢谢啦答很清楚再答:嗯嗯
血球计数板能将死细胞计算在内,而平板计数法只能计数活细胞(只有活细胞才能在平板上长,而且再操作过程中还有本来活着的细胞死亡),故一般情况下血球计数板计数法偏高,稀释涂布法偏低
有2种规格,25x16和16x25的.血球计数板的计数室是一个大格,分为若干个中格,每个中格又分成若干个小格,25x16的规格就是计数室先分成25个中格,每个中格再分成16个小格,共计400格小格,无
如果太多,计数板的线下方也会有如果太多,要先稀释
洗净后,将盖玻片盖在计数板上,用移液管吸取样品,轻轻滴在盖玻片与计数板载玻片的边缘上,利用虹吸现象就好.记住要先将盖玻片盖好,再利用虹吸现象,而不是一般玻璃制片时先滴加样品再盖盖玻片.然后静置,就可以
16*40倍就可以了,即放大400以上就可以了,细胞计数板不贵,大概10几块就可以了,在当地的试剂店就可以买到.
原则是只数完整的细胞,若细胞聚集成团时,只按照一个细胞计算.如果细胞压在格线上时,则只计上线,不计下线,只计右线,不计左线.加入染液后就可以在显微镜下区别活细胞和死细胞