如何观察样品在电泳过程中所处的大概位置
来源:学生作业帮助网 编辑:作业帮 时间:2024/09/30 10:25:57
烧杯,铁三架,石棉网,酒精灯,试管夹
A:碳酸钠和碳酸氢钠固体都是白色粉末,不行.B:在少量样品中滴入几滴水,无反应,不行.C:在饱和溶液中滴入几滴酚酞,碳酸钠电离出Na+,CO32-,碳酸钠溶液显碱性,酚酞变红.碳酸氢钠电离出Na+,H
主要是看tris的缓冲范围,Tris缓冲液的有效缓冲范围在pH7.0到9.2之间,算是中性和偏碱性.DNA肯定是要带负电荷的,所以电泳的时候才会向正极跑.电泳槽一般都会标明正负极的,只要把电源和电泳槽
能用一样的,不连续体系也可用一样的.本身不连续体系的pH与网孔就是不一样的.聚丙烯酰胺凝胶电泳可分为连续的和不连续的两类,前者指整个电泳系统中所用缓冲液,pH值和凝胶网孔都是相同的,后者是指在电泳系统
不知道分子量的情况下就尽可能选择浓度高的分离胶,因为浓度低的胶很有可能蛋白就跑出去了.先用高浓度的胶跑一次,然后看条带再调整下分离胶浓度再做一次就行了.另外,一般快速测定蛋白浓度的方法就是用分光光度计
是黑的
同意楼下,不能看到很明显的条带,有可能是蛋白在提取过程中降解了.建议提取过程中使用蛋白酶抑制剂,低温操作.或者直接用上样缓冲液处理细胞.
膜薄其实与工件轻重没有关系,你是不是单钩挂,挂具与工件的接触不好导致导电不良,工件的膜厚主要与电泳漆固成分、电泳漆温度、电泳时间与电泳电压有关,都成正比例关系.如果是单钩挂的话,建议你试试双钩挂,卡工
三种氨基酸的PI值分别是,Arg:10.67His:7.59Glu:3.22并且我们知道,在等电点以上的任一PH,氨基酸带净负电,因此在电场中向正极移动.在一定PH的范围内,氨基酸溶液的PH离等电点越
用相差显微镜呗,很贵很贵就是了
你是要做活性胶吧.这种胶又叫naturalgel.顾名思义就是蛋白质在其中电泳的时候是保持不变性的.所以不能有SDS.下面是一篇参考文献,如何做SOD活性胶:
SDS-PAGE是以聚丙烯酰胺凝胶作为支持介质的一种常用电泳技术.聚丙烯酰胺凝胶由单体丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺聚合而成,聚合过程由自由基催化完成.催化聚合的常用方法有两种:化学聚合法和光聚合法.化学聚
题目是不是打错了怎么22.3+86.1小于198.4呢再问:不好意思!应该是Na2Co3和NaCl的混合物样品(固体)22.3g加100.0g水完全溶解,搅拌后加86.1gCaCl2溶液(恰好反映)经
它告诉我们:想要成为学习的主人,不仅要做到在学中问,在问中学,养成勤学好问的习惯,还要将勤学好问和观察思考结合起来,并做到不断思考、不断探求,养成持之以恒的习惯.
你说的电泳是琼脂糖凝胶吗?不是也没有关系,通常在跑胶前都会在Buffer的,并要和样品充分混合,只是因为蔗糖的比较重可以使样品沉到点样孔中,不会飘出来,最大限度地跑到胶里去,得到更好的结果.一般在试剂
marker能看到吗?marker很清楚,电泳就没问题.说明没有DNA.可能提取失败,沉淀也许是盐.测测浓度吧,应该很低.看看提取程序是不是有问题.
DNA浓度很低吧,沉淀多不一定DNA纯度就高,有可能蛋白质也很多,提DNA的过程中蛋白质有过多残留.跑电泳不知道你的buffer那条线有没有,如果也没有的话也许就是电泳的操作过程中出现问题了.
等电聚焦电泳是根据被分离的蛋白质组分间的等电点的差异被分离,具有不同等电点的蛋白质会停留在相应的pH区带,SDS-PAGE凝胶电泳是根据蛋白质组分间的分子量大小差异进行分离的,分子量不同的蛋白质会停留