mtt法

博凌科为活细胞中的脱氢酶能将MTT还原成不溶于水的蓝紫色产物（甲臜,Formazan),并沉淀在细胞中,而死细胞没有这种功能.二甲亚砜（DMSO）能溶解沉积在细胞中的蓝紫色结晶物,溶液颜色深浅与所含的

MTT是测细胞活性的不能用来计数最简单的是那血球计数板直接给细胞计数麻烦点的就是染DAPI拍照后计数或者过流式

四唑盐（MTT）商品名为噻唑蓝操作步骤一、接种细胞1、用胰蛋白酶消化汇合的单层细胞,将细胞收集到含血清的培养基中.　　2、离心细胞悬液,使细胞沉积下来.用培养基重悬细胞,计数.　　3、将细胞稀释至2.

原理：活细胞中脱氢酶能将四唑盐还原成不溶于水的蓝紫色产物甲臜,并沉淀在细胞中,而死细胞没有这种功能.DMSO能溶解沉积在细胞中蓝紫色结晶物,溶液颜色深浅与所含的formazan量成正比.再用酶标仪测定

SRB是一种蛋白结合染料,与生物大分子中的碱性氨基酸结合,其颜色变化与活细胞蛋白成正比；MTT法以代谢还原MTT为基础,活细胞的线粒体中存在脱氢酶,可将黄色的MTT还原为蓝紫色Formazan,死细胞

我找到一个不一样的方法,不知是否有帮助：MTT法MTT法又称MTT比色法,是一种检测细胞存活和生长的方法.其检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒（For

博凌科为一般文献报道的方法,是贴壁细胞在细胞贴壁后加药物（一般为上板后24h）,而悬浮细胞是上板同时加.但是,在操作中具体要根据实验本身要检测的指标来确定时间.如果是做有关细胞增殖的药物,加药的时机影

博凌科为MTT比色法细胞活力检测中最重要的就是背景对照,就是不加细胞的对照.这包括两方面内容,一是指与实验孔相同,对照孔中也加入相同体积的培养基,各做3-4个复孔,取平均值,主要目的是为了减少培养基中

博凌科为（1）选择适当的细胞接种浓度.一般情况下,96孔培养板的内贴壁细胞长满时约有lo6个细胞.但由于不同细胞贴壁后面积差异很大,因此,在进行MTT比色法细胞活力检测实验前,掌握每一种细胞的贴壁率、

博凌科为贴壁细胞一般在实验前1-2日接入96孔板.太晚,细胞在传代后有一个16小时左右的停滞期,此时代谢变慢,增殖缓慢,此时的MTT数值太低；太早,实验期间,细胞生长过头,此时有死亡和凋亡的细胞,实验

这个不行的,细胞在经药物处理后,再加入MTT,就与细胞发生了反应,一般来说,加入MTT后,要在尽量短的时间内测定出结果才可以的,不然结果就不准确了,曾做过实验对比,放置几天后再测定光吸收值,与首次测定

需要用7块板.因为做的MTT之后,这块板就污染了,不能继续培养细胞了.

MTS检测方法是检测细胞增殖、细胞毒性的常用方法.具体方法：细胞生长检测：MTS检测法1．培养IL-2依赖细胞株CTLL-2细胞或HT-2细胞（检测IL-2）,或者IL-3依赖细胞株FDC-P1细胞或

抑制率=（实验组-空白组）/(对照组-空白组)×100%,IC50有软件可以算出...想要的话留邮箱

博凌科为（1）OD值转换为细胞数似乎不太好操作,就像楼上战友说的那样,影响因素比较多,单个细胞活性与MTT转化量是有关系的,所以需要有一个标准细胞活性的参照才能计算细胞数.（2）OD应该在0.2~1之

是生长成70%,就是细胞贴壁覆盖率达到70%.其实这并不那么严格,如果你的这个细胞长的比较快,比如说癌细胞那样,那就细胞传到培养板时密度要小一些.不然没等你做完实验细胞就长满,漂起来了.如果长的较慢那

当前利用流式细胞仪和染料CFSE结合来分析淋巴细胞的增殖已经被广泛应用.这项技术能够实现对体外或体内8至10个不同细胞分裂周期的可视化.这种方法的另外益处是可以通过细胞分选的办法将所需的分裂不同代数的

（1）单细胞悬液接种于96孔培养板；103-104细胞/孔,每孔培养基总量200微升（96孔培养板每孔容积370微升）,37℃、5％CO2培养箱中培养一段时间（根据实验目的决定培养时间）（2）加入2毫

用Origin或者Excel都可以的

MTT法又称MTT比色法,是一种检测细胞存活和生长的方法.其检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒（Formazan）并沉积在细胞中,而死细胞无此功能.二