酶切产物电泳检测无条带这是怎么回事?
来源:学生作业帮 编辑:作业帮 分类:生物作业 时间:2024/10/04 11:36:31
酶切产物电泳检测无条带这是怎么回事?
最近做酶切,出现很奇怪的现象.我四种要酶切的样品,分别进行单酶切和双酶切,结果电泳结果是只有一个可以切出1KB片段的样品有条带,其他几个只需要切出一个末端的样品却什么都没有.
酶切体系绝对一样,我是先总量混合在分装的.
不是没切开,电泳结果显示的是什么都没有就像直接点loading buffer进去一样.
我的酶切体系是这样的.
双酶切:12ul ddH2O、6ul tango buffer、1ul BamH1、1ul Hind3、10ul 样品质粒
单酶切:16ul ddH2O、3ul BamH1 buffer、1ul BamH1、10ul 样品质粒
顺便问下,我那个1KB的条带拖尾严重,是不是可能因为我酶切时间过长?我一般都是过夜12小时左右
关于质粒纯度问题,我四种样品都是用一种试剂盒提的。而且如果是纯度问题应该是随机出现在四种中,但是我两次都只有那个1KB的片段有条带。
质粒的上样量也没问题,我原始质粒对照上样量2ul条带很亮,酶切体系里质粒10ul稀释到30ul,上样量5ul,实际含量应该和原始质粒上样量差不多。
最近做酶切,出现很奇怪的现象.我四种要酶切的样品,分别进行单酶切和双酶切,结果电泳结果是只有一个可以切出1KB片段的样品有条带,其他几个只需要切出一个末端的样品却什么都没有.
酶切体系绝对一样,我是先总量混合在分装的.
不是没切开,电泳结果显示的是什么都没有就像直接点loading buffer进去一样.
我的酶切体系是这样的.
双酶切:12ul ddH2O、6ul tango buffer、1ul BamH1、1ul Hind3、10ul 样品质粒
单酶切:16ul ddH2O、3ul BamH1 buffer、1ul BamH1、10ul 样品质粒
顺便问下,我那个1KB的条带拖尾严重,是不是可能因为我酶切时间过长?我一般都是过夜12小时左右
关于质粒纯度问题,我四种样品都是用一种试剂盒提的。而且如果是纯度问题应该是随机出现在四种中,但是我两次都只有那个1KB的片段有条带。
质粒的上样量也没问题,我原始质粒对照上样量2ul条带很亮,酶切体系里质粒10ul稀释到30ul,上样量5ul,实际含量应该和原始质粒上样量差不多。
建议你做如下改进:
1.原始质粒上样2ul,电泳检测,确定质粒质量没问题;
2.所有酶切体系均改为10ul,其中质粒2ul,酶0.1ul (双酶切时另一种酶也加0.1ul ),buffer终浓度为 1×,剩下为去离子水.酶切时间为4小时左右.
3.电泳用的凝胶最好为新鲜配制的,浓度视质粒大小而定,一般为1%;
电泳的缓冲液最好也是新鲜配制的,电泳电压适当.
1KB的条带拖尾严重,可能是凝胶不新鲜,或者是电泳时电压过高,或者是酶切时间过长.上述建议中已经给出解决方法.
至于你说的奇怪现象,可能质粒已经降解,也可能是酶切过久导致降解,也可能是枪头或者离心管等器材污染,总之保证一切是新鲜的,再做一次.
1.原始质粒上样2ul,电泳检测,确定质粒质量没问题;
2.所有酶切体系均改为10ul,其中质粒2ul,酶0.1ul (双酶切时另一种酶也加0.1ul ),buffer终浓度为 1×,剩下为去离子水.酶切时间为4小时左右.
3.电泳用的凝胶最好为新鲜配制的,浓度视质粒大小而定,一般为1%;
电泳的缓冲液最好也是新鲜配制的,电泳电压适当.
1KB的条带拖尾严重,可能是凝胶不新鲜,或者是电泳时电压过高,或者是酶切时间过长.上述建议中已经给出解决方法.
至于你说的奇怪现象,可能质粒已经降解,也可能是酶切过久导致降解,也可能是枪头或者离心管等器材污染,总之保证一切是新鲜的,再做一次.
载体酶切产物电泳时检测胶上有条带,回收胶上却降解了,请教各位大虾这是怎么回事?
PCR产物电泳检测结果点样孔很亮,没有目的条带.是什么原因?marker的条带正常.
在做荧光定量PCR时,PCR仪检测不到荧光信号,但是产物用琼脂糖电泳后有清晰的目的条带,请问这是为什么?
PCR之后电泳没有条带,连引物二聚体都没有?这是怎么回事了?
提出来的RNA 电泳检测时没有条带 用的是1%琼脂糖电泳
菌液pcr检测目的条带很明显但是有弱杂带是怎么回事
以蒸馏水为模板进行PCR扩增,电泳检测有亮带 这是怎么回事?
胶回收:雀式pcr第一对pcr引物扩增后 ,产物电泳得到两条带,那么我该切哪一条啊?
PCR产物的电泳条带不够亮,为何?如何优化PCR反应体系
提取细菌DNA检测到有条带,PCR后无条带;而基因组DNA检测到无条带的,PCR后却有条带.怎么解释?
dna有od值但是凝胶成像无条带是怎么回事?
DNA经pcr扩增后电泳出现了三条带是怎么回事?